Бензонасос волга в Симферополе: 57-товаров: бесплатная доставка, скидка-9% [перейти]
Партнерская программаПомощь
Симферополь
Каталог
Каталог Товаров
Одежда и обувьОдежда и обувь
СтройматериалыСтройматериалы
Здоровье и красотаЗдоровье и красота
Текстиль и кожаТекстиль и кожа
Детские товарыДетские товары
Продукты и напиткиПродукты и напитки
ЭлектротехникаЭлектротехника
ПромышленностьПромышленность
Дом и садДом и сад
Торговля и складТорговля и склад
Вода, газ и теплоВода, газ и тепло
Все категории
ВходИзбранное
Насос Топливный Волга, Газель Змз-402 901 Pekar арт. 901110601001 Объем, л: 0.927, Вес, кг: 0.927
В МАГАЗИНБензонасос Волга-3110 дв. 406 инжектор с кронштейном (50.1139-01) (г.Старый Оскол) Модель
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический ГАЗ-3110, 3302, дв. ЗМЗ-405, мото СОАТЭ Производитель: СОАТЭ, Модель
ПОДРОБНЕЕБензонасос погружной Волга 31105, 3102, 31022 дв.
2.4 Крайслер Модель автомобиля: ГАЗ 31105 Волга
Бензонасос Волга-3110 дв. 406 инжектор с кронштейном (50.1139-01) (г.Старый Оскол) Модель
ПОДРОБНЕЕБензонасос ГАЗ 406 дв. Крайслер, CRTR0067844, 1 шт CARTRONIC Производитель: Cartronic
ПОДРОБНЕЕБензонасос погружной Волга дв. 406 ЗМЗ под резьбу Производитель: ЗМЗ
ПОДРОБНЕЕБензонасос Волга Газель Тип: карбюратор, Модель автомобиля: ГАЗ Газель
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический 3,0 Bar-1 шт-ГАЗ-3110 406 Kortex Производитель: KORTEX, Модель автомобиля:
ПОДРОБНЕЕБензонасос ГАЗ 3110, 3302, 2705 погружной двигатель 406 электрический DENSO DFP0106 Производитель:
ПОДРОБНЕЕ 3110электровыноснойинжекторкрайслерБензонасос электрический для ГАЗ 3102, 3110 Волга Евро 2 (KSZC A309) в сборе арт CRTR0068104
ПОДРОБНЕЕБензонасос Газ 3110,3302, змз-406 Pekar Производитель: PEKAR, Модель автомобиля: ГАЗ-3110
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический ГАЗ-3110 3302 дв.
ЗМЗ-405 мотор СОАТЭ Производитель: СОАТЭ, Модель
Бензонасос электрический для ГАЗ 3102, 3110 Волга Евро 3 (KSZC A308) арт CRTR0067844 Производитель:
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический для а/м ГАЗ 21029, 3110, 31105 Волга (двигатель ЗМЗ 4062), подвесной с центр. креплением, арт. FE0002
ПОДРОБНЕЕБензонасос 3302 Волга дв.402 Пекар Производитель: PEKAR
ПОДРОБНЕЕБензонасос ГАЗ-3302, 3110, УАЗ-452, 469, 31512, дв. 402 Pekar Производитель: PEKAR, Модель
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический для ГАЗ 3302 Газель, 3110 Волга (KSYB 3825) арт CRTR0069343 Производитель:
ПОДРОБНЕЕБензонасос в сборе ГАЗ(Волга,двигатель Крайслер)сэпо-авто Модуль электробензонасоса — арт. 7Д5.883.027
ПОДРОБНЕЕБензонасос для Газ Волга дв ЗМЗ 406 электрический в сборе STARTVOLT Производитель: STARTVOLT
ПОДРОБНЕЕБензонасос погружной Волга дв.
406 ЗМЗ под защелки Производитель: ЗМЗ
Бензонасос FENOX EFP10002O7 для а/м ГАЗ/GAZ-3110 406дв инжектор со штуцером/ волга 3110 MOT 406/ ГАЗ EFP10002O7 (1шт)
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический 3,0 Bar-1 шт-ГАЗ-3110 406 Kortex Производитель: KORTEX, Модель автомобиля:
ПОДРОБНЕЕБензонасос Волг_а (901) пекар Производитель: PEKAR
ПОДРОБНЕЕБензонасос/Топливный насос 4061139000 двигатель ЗМЗ 406 на ГАЗ 3102/3110/31105 Волга/Газель/Соболь VPM
ПОДРОБНЕЕБензонасос в сборе ГАЗ(Волга) 7Д5.883.028 сэпо-авто Модуль электробензонасоса — арт. 7Д5.883.028
ПОДРОБНЕЕБензонасос электрический (мотор) ГАЗ Волга,Газель инж. HOFER АвтоМаксимум Тип: электробензонасос ,
ПОДРОБНЕЕБензонасос 406дв. погруж.типа Волга (модуль) (10619)
ПОДРОБНЕЕ2 страница из 22
Бензонасос волга
Генетически сконструированные искусственные микровезикулы, несущие фактор роста нервов, сдерживают прогрессирование аутоиммунного энцефаломиелита в экспериментальной мышиной модели
P.
Посмертный отбор образцов поражений головного мозга при рассеянном склерозе под контролем МРТ: увеличение количества активных демиелинизирующих и (р)реактивных поражений. Мозг. 2001; 124:1635–1645. doi: 10.1093/мозг/124.8.1635. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
2. Луккинетти С., Брюк В., Паризи Дж., Шайтхауэр Б., Родригес М., Лассманн Х. Гетерогенность поражений рассеянным склерозом: последствия для патогенеза демиелинизации. Анна. Нейрол. 2000; 47: 707–717. doi: 10.1002/1531-8249(200006)47:6<707::AID-ANA3>3.0.CO;2-Q. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Barnett M.H., Prineas J.W. Рецидивирующий и ремиттирующий рассеянный склероз: патология новообразования. Анна. Нейрол. 2004; 55: 458–468. doi: 10.1002/ana.20016. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
4. Лассманн Х. Патология рассеянного склероза. Харб Колд Спринг. Перспектива. Мед. 2018;8:a028936. doi: 10.1101/cshperspect.a028936. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Хайбуллин Т.
, Иванова В., Мартынова Е., Черепнев Г., Хабиров Ф., Гранатов Е., Ризванов А., Хайбуллина С. Повышенные уровни провоспалительных цитокинов в спинномозговой жидкости больных рассеянным склерозом. Передний. Иммунол. 2017;8:531. doi: 10.3389/fimmu.2017.00531. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Лепеннетье Г., Грацко З., Унгер М., Ван Гринсвен М., Груммель В., Крумбхольц М., Бертель А., Хеммер Б., Коварик М.С. Профилирование цитокинов и иммунных клеток в спинномозговой жидкости больных нейровоспалительными заболеваниями. Дж. Нейровоспаление. 2019;16:219. doi: 10.1186/s12974-019-1601-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Prineas J.W., Kwon E.E., Cho E.-S., Sharer L.R., Barnett M.H., Oleszak E.L., Hoffman B., Morgan B.P. Иммунопатология вторично-прогрессирующего рассеянного склероза. Анна. Нейрол. 2001; 50: 646–657. doi: 10.1002/ana.1255. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
8. Ponath G., Ramanan S., Mubarak M.
, Housley W., Lee S., Sahinkaya F.R., Vortmeyer A., Raine C.S., Pitt D. Миелиновый фагоцитоз астроцитами после повреждения миелина способствует развитию патологии. Мозг. 2017; 140:399–413. doi: 10.1093/brain/aww298. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Wang D., Ayers M.M., Catmull D.V., Hazelwood L.J., Bernard C.C., Orian J.M. Повреждение аксонов, связанное с астроцитами, на ранних стадиях экспериментального аутоиммунного заболевания энцефаломиелит. Глия. 2005; 51: 235–240. doi: 10.1002/glia.20199. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Фергюсон Б., Матышак М. К., Эсири М. М., Перри В. Х. Повреждение аксонов при остром рассеянном склерозе. Часть 3 Мозг. 1997; 120:393–399. doi: 10.1093/мозг/120.3.393. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Укконен М., Дастидар П., Хейнонен Т., Лаасонен Э., Эловаара И. Объемный количественный анализ с помощью МРТ при первично-прогрессирующем рассеянном склерозе: объемы бляшек и атрофии коррелируют с неврологическая инвалидность.
Евро. Дж. Нейрол. 2003; 10: 663–669.. doi: 10.1046/j.1468-1331.2003.00617.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Batista S., Zivadinov R., Hoogs M., Bergsland N., Heininen-Brown M., Dwyer M.G., Weinstock-Guttman B., Benedict R.H.B. Базальные ганглии, таламус и неокортикальная атрофия предсказывают замедление когнитивной обработки при рассеянном склерозе. Дж. Нейрол. 2012; 259:139–146. doi: 10.1007/s00415-011-6147-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Julian L.J., Vella L., Vollmer T., Hadjimichael O., Mohr D.C. Работа при рассеянном склерозе. Выход и возвращение на работу. Дж. Нейрол. 2008; 255:1354–1360. doi: 10.1007/s00415-008-0910-й. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Brissart H., Morele E., Baumann C., Debouverie M. Вербальная эпизодическая память у 426 пациентов с рассеянным склерозом: нарушение кодирования, поиска или того и другого. ? Нейрол. науч. 2012;33:1117–1123. doi: 10.1007/s10072-011-0915-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15.
Лолейт В., Биберахер В., Хеммер Б. Текущие и будущие методы лечения рассеянного склероза, нацеленные на иммунную систему. Курс. фарм. Биотехнолог. 2014; 15: 276–296. doi: 10.2174/1389201015666140617104332. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Вэй В., Д. Ма, Л. Ли, Л. Чжан. Прогресс в применении лекарств для лечения рассеянного склероза. Передний. Фармакол. 2021;12:724718. doi: 10.3389/fphar.2021.724718. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Фассас А., Пассвег Дж.Р., Анагностопулос А., Казис А., Козак Т., Хаврдова Э., Каррерас Э., Граус Ф., Кашьяп А., Опеншоу Х. и др. Трансплантация гемопоэтических стволовых клеток при рассеянном склерозе. Дж. Нейрол. 2002;249: 1088–1097. doi: 10.1007/s00415-002-0800-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Rice C.M., Kemp K., Wilkins A., Scolding N.J. Клеточная терапия рассеянного склероза: развивающаяся концепция с последствиями для других нейродегенеративных заболеваний. Ланцет. 2013; 382:1204–1213.
doi: 10.1016/S0140-6736(13)61810-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Бонаб М.М., Язданбахш С., Лотфи Дж., Алимогаддом К., Талебиан Ф., Хушманд Ф., Гавамзаде А., Никбин Б. Помогает ли терапия мезенхимальными стволовыми клетками больных рассеянным склерозом? Отчет о пилотном исследовании. Иран. Дж. Иммунол. 2007; 4: 50–57. [PubMed] [Академия Google]
20. Ли Дж.-Ф., Чжан Д.-Дж., Гэн Т., Чен Л., Хуан Х., Инь Х.-Л., Чжан Ю.-З., Лу Дж.-Ю. , Цао Б., Ван Ю.-Л. Потенциал мезенхимальных стволовых клеток, полученных из пуповины человека, в качестве новой клеточной терапии рассеянного склероза. Трансплантация клеток. 2014; 23 ((Приложение S1)): S113–S122. doi: 10.3727/096368914X685005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Ямут Б., Хурани Р., Салти Х., Барада В., Эль-Хадж Т., Аль-Кутуби А., Херлопян А., Баз Е.К., Махфуз Р., Халил-Хамдан Р. и др. Трансплантация мезенхимальных стволовых клеток костного мозга у пациентов с рассеянным склерозом: пилотное исследование.
Дж. Нейроиммунол. 2010; 227:185–189. doi: 10.1016/j.jneuroim.2010.07.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Ghasemi N. Терапевтические эффекты мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, на процесс ремиелинизации при воспалительных демиелинизирующих заболеваниях. Дж. Хистол. Гистопатол. 2015;2:8. doi: 10.7243/2055-091X-2-8. [CrossRef] [Google Scholar]
23. Takahashi M., Li T.-S., Suzuki R., Kobayashi T., Ito H., Ikeda Y., Matsuzaki M., Hamano K. Цитокины, продуцируемые костным мозгом клетки могут способствовать функциональному улучшению инфарктного сердца, защищая кардиомиоциты от ишемического повреждения. Являюсь. Дж. Физиол. Цирк. Физиол. 2006;291: Н886–Н893. doi: 10.1152/ajpheart.00142.2006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Gnecchi M., He H., Liang O.D., Melo L.G., Morello F., Mu H., Noiseux N., Zhang L., Pratt R.E., Ingwall J.S., и другие. Паракринное действие объясняет выраженную защиту ишемического сердца Akt-модифицированными мезенхимальными стволовыми клетками.
Нац. Мед. 2005; 11: 367–368. doi: 10.1038/nm0405-367. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Xu M., Uemura R., Dai Y., Wang Y., Pasha Z., Ashraf M. In vitro и in vivo эффекты стволовых клеток костного мозга на сердечные заболевания. структура и функция. Дж. Мол. Клетка. Кардиол. 2007; 42: 441–448. doi: 10.1016/j.yjmcc.2006.10.009. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Haynesworth S.E., Baber M.A., Caplan A.I. Экспрессия цитокинов мезенхимальными клетками-предшественниками костного мозга человека in vitro: эффекты дексаметазона и IL-1 альфа. J. Cell Physiol. 1996; 166: 585–592. doi: 10.1002/(SICI)1097-4652(199603)166:3<585::AID-JCP13>3.0.CO;2-6. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Zhang Y., Chopp M., Meng Y., Katakowski M., Xin H., Mahmood A., Xiong Y. Влияние экзосом, полученных из мультиплюрипотентных мезенхимальных стромальных клеток. на функциональное восстановление и нейроваскулярную пластичность у крыс после черепно-мозговой травмы.
Дж. Нейрохирург. 2015; 122:856–867. doi: 10.3171/2014.11.JNS14770. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Дроммельшмидт К., Сердар М., Бендикс И., Герц Дж., Бертлинг Ф., Прагер С., Келлер М., Людвиг А.-К., Духан В., Радтке С. и соавт. Внеклеточные везикулы, полученные из мезенхимальных стволовых клеток, облегчают вызванное воспалением преждевременное повреждение головного мозга. Мозговое поведение. Иммун. 2017;60:220–232. doi: 10.1016/j.bbi.2016.11.011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Офельдерс Д.Р., Вольфс Т.Г., Йеллема Р.К., Званенбург А., Андриссен П., Делхаас Т., Людвиг А.-К., Радтке С., Петерс В., Янссен Л. и др. Внеклеточные везикулы, полученные из мезенхимальных стромальных клеток, защищают мозг плода после гипоксии-ишемии. Стволовые клетки Пер. Мед. 2016;5:754–763. дои: 10,5966/ст.2015-0197. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Xin H., Li Y., Cui Y., Yang JJ, Zhang Z.G., Chopp M. Системное введение экзосом, высвобожденных из мезенхимальных стромальных клеток.
Функциональное восстановление и нейроваскулярная пластичность после инсульта у крыс. Дж. Цереб. Кровоток Метаб. 2013;33:1711–1715. doi: 10.1038/jcbfm.2013.152. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Lai R.C., Tan S.S., Yeo R.W.Y., Choo ABH, Reiner A., Su Y., Shen Y., Fu Z., Alexander L. , Sze S.K., et al. МСК секретируют как минимум 3 типа EV, каждый из которых имеет уникальную перестановку мембранных липидов, белков и РНК. Дж. Экстраселл. Везикулы. 2016;5:29828. doi: 10.3402/jev.v5.29828. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Raposo G., Nijman HW, Stoorvogel W., Liejendekker R., Harding C.V., Melief CJ, Geuze HJ В-лимфоциты секретируют антигенпрезентирующие везикулы. Дж. Эксп. Мед. 1996; 183:1161–1172. doi: 10.1084/jem.183.3.1161. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Коломбо М., Мойта С., Ван Нил Г., Коваль Дж., Виньерон Дж., Бенароч П., Манель Н., Мойта Л.Ф. , Théry C., Raposo G. Анализ функций ESCRT в биогенезе экзосом, составе и секреции подчеркивает гетерогенность внеклеточных везикул.
Часть 24J. Клеточная наука. 2013;126:5553–5565. doi: 10.1242/jcs.128868. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
34. Эльд М., Экстрем К., Валади Х., Шёстранд М., Олссон Б., Йернас М., Лётвалл Дж. Экзосомы передают защитные сообщения во время окислительного стресса; Возможная роль экзосомальной РНК челнока. ПЛОС ОДИН. 2010;5:e15353. doi: 10.1371/journal.pone.0015353. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Valadi H., Ekström K., Bossios A., Sjöstrand M., Lee J.J., Lötvall J.O. Опосредованный экзосомами перенос мРНК и микроРНК представляет собой новый механизм генетического обмена между клетками. Нац. Клеточная биол. 2007;9: 654–659. дои: 10.1038/ncb1596. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Song Z., Wang Z., Shen J., Xu S., Hu Z. Доставка фактора роста нервов путем ультразвукового разрушения нанопузырьков как лечение острого спинного мозга травмы у крыс. Междунар. Дж. Наномед. 2017; 12:1717–1729. doi: 10.2147/IJN.S128848. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37.
Ван Л., Гу С., Ган Дж., Тянь Ю., Чжан Ф., Чжао Х., Лэй Д. Сверхэкспрессия нервных стволовых клеток Фактор роста нервов улучшает функциональное восстановление у крыс после травмы спинного мозга за счет модулирования микроокружения и усиления эндогенного нейрогенеза. Передний. Клетка. Неврологи. 2021;15:773375. дои: 10.3389/fncel.2021.773375. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Fine EG, Decosterd I., Papaloizos M., Zurn A.D., Aebischer P. GDNF и NGF, высвобождаемые синтетическими направляющими каналами, поддерживают регенерацию седалищного нерва через длинный разрыв. Евро. Дж. Нейроски. 2002; 15: 589–601. doi: 10.1046/j.1460-9568.2002.01892.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Althaus H.H., Klöppner S., Schmidt-Schultz T., Schwartz P. Фактор роста нервов индуцирует пролиферацию и усиливает регенерацию волокон в олигодендроцитах, выделенных из мозга взрослой свиньи. Неврологи. лат. 1992;135:219–223. doi: 10.1016/0304-3940(92)90440-I. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40.
Takano R., Hisahara S., Namikawa K., Kiyama H., Okano H., Miura M. Фактор роста нервов защищает олигодендроциты от фактора некроза опухоли-α. Травма через Akt-опосредованные сигнальные механизмы. Дж. Биол. хим. 2000; 275:16360–16365. doi: 10.1074/jbc.M910419199. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Коэн Р.И., Мармур Р., Нортон В.Т., Мелер М.Ф., Кесслер Дж.А. Фактор роста нервов и нейротрофин-3 по-разному регулируют пролиферацию и выживание развивающихся олигодендроцитов мозга крысы. Дж. Нейроски. 1996;16:6433–6442. doi: 10.1523/JNEUROSCI.16-20-06433.1996. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Du Y., Fischer T.Z., Lee L.N., Lercher L.D., Dreyfus C.F. Регионально-специфические эффекты BDNF на олигодендроциты. Дев. Неврологи. 2003; 25: 116–126. doi: 10.1159/000072261. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Lucchinetti C.F., Popescu B.F.G., Bunyan R.F., Moll N.M., Roemer S.F., Lassmann H., Brück W., Parisi J.E., Scheithauer B.W., Giannini C.
, et al. Воспалительная корковая демиелинизация при раннем рассеянном склерозе. Н. англ. Дж. Мед. 2011; 365:2188–2197. doi: 10.1056/NEJMoa1100648. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Флюгель А., Мацумуро К., Нойманн Х., Клинкерт В.Е., Бирнбахер Р., Лассманн Х., Оттен У., Векерле Х. Анти -воспалительная активность фактора роста нервов при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите: ингибирование трансэндотелиальной миграции моноцитов. Евро. Дж. Иммунол. 2001; 31:11–22. doi: 10.1002/1521-4141(200101)31:1<11::AID-IMMU11>3.0.CO;2-G. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Kannan Y., Usami K., Okada M., Shimizu S., Matsuda H. Фактор роста нервов подавляет апоптоз мышиных нейтрофилов. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 1992;186:1050–1056. doi: 10.1016/0006-291X(92)90853-D. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Разави С., Назем Г., Мардани М., Эсфандиари Э., Эсфахани С., Салехи Х. Нейротрофические факторы и их эффекты при лечении рассеянного склероза.
Доп. Биомед. Рез. 2015;4:53. doi: 10.4103/2277-9175.151570. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Виллослада П., Хаузер С.Л., Бартке И., Унгер Дж., Хилд Н., Розенберг Д., Чунг С.В., Мобли В.К., Фишер С. ., Генайн С.П. Фактор роста нервов человека защищает обычных мартышек от аутоиммунного энцефаломиелита путем изменения баланса цитокинов Т-хелперов 1 и 2 типа в центральной нервной системе. Дж. Эксп. Мед. 2000;191: 1799–1806. doi: 10.1084/jem.191.10.1799. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Мерклер Д., Эрнстинг Т., Кершенштайнер М., Брюк В., Штадельманн К. Новая фокальная модель ЭАЭ кортикальной демиелинизации: рассеянный склероз. как поражения с быстрым исчезновением воспаления и обширной ремиелинизацией. Мозг. 2006; 129:1972–1983. doi: 10.1093/brain/awl135. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Лок С., Германс Г., Педотти Р., Брендолан А., Шадт Э., Гаррен Х., Лангер-Гулд А., Стробер С., Каннелла Б. ., Аллард Дж. и др. Анализ генных микрочипов очагов рассеянного склероза дает новые мишени, подтвержденные при аутоиммунном энцефаломиелите. Нац. Мед. 2002; 8: 500–508. doi: 10.1038/nm0502-500. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
50. Гомзикова М.О., Журавлева М.Н., Мифтахова Р.Р., Архипова С.С., Евтугин В.Г., Хайбуллина С.Ф., Киясов А.П., Перссон Дж.Л., Монган Н.П., Пестелл Р.Г., и др. Мембранные везикулы, индуцированные цитохалазином В, передают ангиогенную активность родительских клеток. Онкотаргет. 2017;8:70496–70507. doi: 10.18632/oncotarget.19723. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
ибуллина С.Ф., и др. др. Ангиогенная активность мембранных везикул, индуцированных цитохалазином В, мезенхимальных стволовых клеток человека. Клетки. 2019;9:95. doi: 10.3390/cells
95. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Костенников А., Кабдеш И., Сабиров Д., Тимофеева А., Рогожин А., Шульман И., Ризванов А., Мухамедшина Ю. Сравнительное исследование местного и системного дозозависимого введения внеклеточных везикул, полученных из мезенхимальных стволовых клеток, при травме спинного мозга крыс.
Биология. 2022;11:1853. doi: 10.3390/biology11121853. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Кабдеш И.М., Архипова С.С., Мухамедшина Ю.О., Джеймс В., Ризванов А.А., Челышев Ю.А. Функция клеток, экспрессирующих NG2/CSPG4, при травме спинного мозга крыс: исследование с помощью иммуноэлектронной микроскопии. Неврология. 2021; 467: 142–149. doi: 10.1016/j.neuroscience.2021.05.031. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Брахмачари С., Фунг Ю.К., Пахан К. Индукция экспрессии глиального фибриллярного кислого белка в астроцитах оксидом азота. Дж. Нейроски. 2006; 26: 4930–4939. doi: 10.1523/JNEUROSCI.5480-05.2006. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Takamiya Y., Kohsaka S., Toya S., Otani M., Tsukada Y. Иммуногистохимические исследования пролиферации реактивных астроцитов и экспрессии белков цитоскелета после травмы головного мозга у крыс. Дев. Мозг Res. 1988;466:201–210. doi: 10.1016/0165-3806(88)
-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 56.
Маркуллис К., Саргианниду И., Шиза Н., Ронкароли Ф., Рейнольдс Р., Клеопа К.А. Потеря щелевого соединения олигодендроцитов и отсоединение от реактивных астроцитов при рассеянном склерозе серого вещества. Дж. Нейропатол. Эксп. Нейрол. 2014;73:865–879. doi: 10.1097/NEN.0000000000000106. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57. Liddelow S.A., Guttenplan K.A., Clarke L.E., Bennett F.C., Bohlen C.J., Schirmer L., Bennett M.L., Münch A.E., Chung W.-S., Peterson T.C., et al. др. Нейротоксические реактивные астроциты индуцируются активированной микроглией. Природа. 2017; 541:481–487. дои: 10.1038/nature21029. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Prineas J.W., Lee S. Рассеянный склероз: разрушение и регенерация астроцитов при острых поражениях. Дж. Нейропатол. Эксп. Нейрол. 2019;78:140–156. doi: 10.1093/jnen/nly121. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Zamanian J.L., Xu L., Foo LC, Nouri N., Zhou L., Giffard R.G.
, Barres B.A. Геномный анализ реактивного астроглиоза. Дж. Нейроски. 2012;32:6391–6410. doi: 10.1523/JNEUROSCI.6221-11.2012. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Рао В.Т.С., Фух С.-К., Карамчандани Дж.Р., Вульф Дж.М.Дж., Муньос Д.Г., Эллезам Б., Блейн М., Хо М.-К., Беделл Б.Дж., Антел Дж. и др. Астроциты в патогенезе рассеянного склероза: исследование микроРНК in situ. Дж. Нейропатол. Эксп. Нейрол. 2019;78:1130–1146. doi: 10.1093/jnen/nlz098. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
61. Claudio L., Raine C.S., Brosnan C.F. Доказательства стойких нарушений гематоэнцефалического барьера при хронически прогрессирующем рассеянном склерозе. Акта Нейропатол. 1995;90:228–238. doi: 10.1007/BF00296505. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Cramer S., Simonsen H., Frederiksen J., Rostrup E., Larsson H. Аномальная проницаемость гематоэнцефалического барьера в нормально выглядящем белом веществе при рассеянном склерозе, исследованная с помощью МРТ.
. Клиника НейроИмидж. 2014; 4:182–189. doi: 10.1016/j.nicl.2013.12.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Чжан Л., Се Х., Цуй Л. Активация астроцитов и экспрессия воспалительных цитокинов у крыс с экспериментальным аутоиммунным энцефаломиелитом. Эксп. тер. Мед. 2018;16:4401–4406. дои: 10.3892/etm.2018.6798. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64. Kocsis J.D., Sasaki M., Lankford K.L., Radtke C. Рассеянный склероз: ремиелинизация. В: Kordower JH, Tuszynski MH, II, редакторы. Регенерация ЦНС: фундаментальная наука и клинический прогресс. Академическая пресса; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2008. стр. 213–435. [CrossRef] [Google Scholar]
65. Aloe L., Micera A. Роль фактора роста нервов в росте олигодендроцитов и дифференцировке крыс с ЭАЭ. Арка итал. биол. 1998;136:247–256. [PubMed] [Google Scholar]
66. Chan J.R., Watkins T.A., Cosgaya J.M., Zhang C., Chen L., Reichardt L.F., Shooter E.M., Barres B.A. NGF контролирует восприимчивость аксонов к миелинизации шванновскими клетками или олигодендроцитами.
Нейрон. 2004;43:183–191. doi: 10.1016/j.neuron.2004.06.024. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67. Ransohoff R.M., Trebst C. Неожиданная плейотропия фактора роста нервов при лечении экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита. Дж. Эксп. Мед. 2000;191: 1625–1630. doi: 10.1084/jem.191.10.1625. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Джафариния М., Альсахебфосул Ф., Салехи Х., Эскандари Н., Азимзаде М., Махмуди М., Асгари С., Хакеми М.Г. Терапевтические эффекты внеклеточных везикул из мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани человека, на хронический экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит. Дж. Селл. Физиол. 2020;235:8779–8790. doi: 10.1002/jcp.29721. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Ruddle N.H., Bergman C.M., McGrath K.M., Lingenheld E.G., Grunnet M.L., Padula S.J., Clark R.B. Антитело к лимфотоксину и фактору некроза опухоли предотвращает передачу экспериментального аллергического энцефаломиелита.
Дж. Эксп. Мед. 1990;172:1193–1200. doi: 10.1084/jem.172.4.1193. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Tejera-Alhambra M., Casrouge A., de Andrés C., Seyfferth A., Ramos-Medina R., Alonso B., Vega J. ., Фернандес-Паредес Л., Альберт М.Л., Санчес-Рамон С. Биомаркеры плазмы различают клинические формы рассеянного склероза. ПЛОС ОДИН. 2015;10:e0128952. doi: 10.1371/journal.pone.0128952. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Im S.H., Hueber A., Monticelli S., Kang K.H., Rao A. Регуляция уровня хроматина Ген IL10 в Т-клетках. Дж. Биол. хим. 2004; 279:46818–46825. doi: 10.1074/jbc.M401722200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Del Prete G., De Carli M., Almerigogna F., Giudizi M.G., Biagiotti R., Romagnani S. Человеческий IL-10 вырабатывается обоими хелперами типа 1 ( Th2) и хелперные Т-клетки типа 2 (Th3) клонируют и ингибируют их антиген-специфическую пролиферацию и продукцию цитокинов. Дж. Иммунол.
1993; 150:353–360. doi: 10.4049/jиммунол.150.2.353. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
73. Молина-Хольгадо Э., Вела Дж.М., Аревало-Мартин А., Гуаса С. Цитотоксичность LPS/IFN-γ в олигодендроглиальных клетках: роль оксида азота и защита противовоспалительным цитокином IL-10. Евро. Дж. Нейроски. 2001; 13: 493–502. doi: 10.1046/j.0953-816x.2000.01412.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
74. Виллакампа Н., Альмолда Б., Вилелла А., Кэмпбелл И.Л., Гонсалес Б., Кастеллано Б. Направленная на астроциты продукция ИЛ-10 вызывает изменения микроглиальной реактивности и уменьшает гибель двигательных нейронов после аксотомии лицевого нерва. Глия. 2015;63:1166–1184. doi: 10.1002/glia.22807. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
75. Hulshof S., Montagne L., De Groot C.J., Van Der Valk P. Клеточная локализация и характер экспрессии интерлейкина-10, интерлейкина-4 и их рецепторов при рассеянном склерозе. Глия. 2002; 38: 24–35. doi: 10.1002/glia.10050. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76.
Наир А., Фредерик Т.Дж., Миллер С.Д. Астроциты при рассеянном склерозе: продукт их окружения. Клетка. Мол. Жизнь наук. 2008; 65: 2702–2720. doi: 10.1007/s00018-008-8059-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
77. Brodie C. Дифференциальные эффекты цитокинов, производных Th2 и Th3, на синтез NGF астроцитами мыши. ФЭБС лат. 1996; 394: 117–120. doi: 10.1016/0014-5793(96)00911-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78. Баласингам В., Йонг В.В. Ослабление астроглиальной реактивности интерлейкином-10. Дж. Нейроски. 1996; 16: 2945–2955. doi: 10.1523/JNEUROSCI.16-09-02945.1996. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Клозе Дж., Шмидт Н.О., Мелмс А., Дохи М., Миядзаки Дж.-И., Бишоф Ф., Греве Б. Подавление экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит с помощью трансдуцированных интерлейкином-10 нейральных стволовых клеток/клеток-предшественников. Дж. Нейровоспаление. 2013;10:117. дои: 10.1186/1742-2094-10-117. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80.
Конфорти А., Скарселла М., Старк Н., Джорда Э., Бьяджини С., Проя А., Карсетти Р., Локателли Ф. , Bernardo M.E. Микровезикулы, полученные из мезенхимальных стромальных клеток, не так эффективны, как их клеточные аналоги, в отношении способности модулировать иммунные ответы in vitro. Стволовые клетки Dev. 2014;23:2591–2599. doi: 10.1089/scd.2014.0091. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Пахлер К., Кеттерл Н., Дежорж А., Дунай З.А., Ланер-Пламбергер С., Штрайф Д., Странк Д., Роде Э. ., Джимона М. Анализ активности in vitro для мониторинга иммуномодулирующего потенциала внеклеточных везикул, полученных из стромальных клеток. Междунар. Дж. Мол. науч. 2017;18:1413. дои: 10.3390/ijms18071413. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
82. Blazquez R., Sanchez-Margallo F.M., de la Rosa O., Dalemans W., Álvarez V., Tarazona R., Casado J.G. Иммуномодулирующий потенциал человеческих жировых мезенхимальных стволовых клеток, полученных из экзосом на стимулированных in vitro Т-клетках.
Передний. Иммунол. 2014;5:556. doi: 10.3389/fimmu.2014.00556. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
83. Mohseny A.B., Szuhai K., Romeo S., Buddingh E.P., Briaire-de Bruijn I., de Jong D., van Pel M., Клетон-Янсен А.-М., Хогендорн П.К. Остеосаркома возникает из мезенхимальных стволовых клеток вследствие анеуплоидизации и геномной потери Cdkn2. Дж. Патол. 2009 г.;219:294–305. doi: 10.1002/path.2603. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
84. Рёсланд Г.В., Свендсен А., Торсвик А., Собала Э., Маккормак Э., Иммерволл Х., Мысливиц Дж., Тонн Дж.-К., Голдбруннер Р. ., Lønning P.E., et al. Долгосрочные культуры мезенхимальных стволовых клеток человека, полученных из костного мозга, часто подвергаются спонтанной злокачественной трансформации. Рак рез. 2009; 69: 5331–5339. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-4630. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
85. Bellagamba B., De Abreu B.R.R., Grivicich I., Markarian C.F., Chem E., Camassola M., Nardi N.B., Dihl R.
R. Мезенхимальные стволовые клетки человека устойчивы к цитотоксическим и генотоксические эффекты цисплатина in vitro. Жене. Мол. биол. 2016;39: 129–134. doi: 10.1590/1678-4685-GMB-2015-0057. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
86. Алоэ Л., Рокко М.Л., Бальзамино Б.О., Микера А. Фактор роста нервов: фокус на неврологии и терапии. Курс. Нейрофармакол. 2015;13:294–303. doi: 10.2174/1570159X13666150403231920. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
87. Деливаноглу Н., Божики М., Теотокис П., Кесидоу Э., Тулуми О., Дафи Н., Нусиопулу Э., Лагудаки Р. , Григориадис Н., Харалампопулос И. и др. Пространственно-временной профиль экспрессии NGF и двухрецепторной системы, TrkA и p75NTR, при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите. Дж. Нейровоспаление. 2020;17:1–17. дои: 10.1186/с12974-020-1708-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
88. Houlton J., Abumaria N., Hinkley S.F., Clarkson A.N. Терапевтический потенциал нейротрофинов для восстановления после черепно-мозговой травмы: рука помощи из биоматериалов.
Передний. Неврологи. 2019;13:790. doi: 10.3389/fnins.2019.00790. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
89. Nagahara A.H., Tuszynski M.H. Возможное терапевтическое использование BDNF при неврологических и психических расстройствах. Нац. Преподобный Друг Дисков. 2011;10:209–219. doi: 10.1038/nrd3366. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
90. Chiaretti A., Eftimiadi G., Soligo M., Manni L., Di Giuda D., Calcagni M.L. Местная доставка фактора роста нервов для лечения заболеваний глаз и головного мозга. Нейронная регенерация. Рез. 2021;16:1740–1750. doi: 10.4103/1673-5374.306062. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
91. Jönhagen M.E., Nordberg A., Amberla K., Bäckman L., Ebendal T., Meyerson B., Olson L., Seiger Å., Шигета М., Теодорссон Э. и соавт. Интрацеребровентрикулярная инфузия фактора роста нервов у трех пациентов с болезнью Альцгеймера. Демент. Гериатр. Познан. Беспорядок. 1998;9:246–257. doi: 10.1159/000017069.
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
92. Apfel S.C. Фактор роста нервов для лечения диабетической невропатии: что пошло не так, что пошло правильно и что нас ждет в будущем? Междунар. Преподобный Нейробиол. 2002; 50: 393–413. doi: 10.1016/s0074-7742(02)50083-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
93. Zhu M., Heydarkhan-Hagvall S., Hedrick M., Benhaim P., Zuk P. Ручное выделение стволовых клеток, полученных из жировой ткани, из липоаспиратов человека. Дж. Вис. Эксп. 2013;79:e50585. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
94. Пик Х., Шмид Э.Л., Таири А.-П., Илегемс Э., Ховиус Р., Фогель Х. Исследование клеточных сигнальных реакций в одиночных аттолитрных везикулах. Варенье. хим. соц. 2005; 127: 2908–2912. doi: 10.1021/ja044605x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Inbetriebnahme der TMP-Line через удаленную поддержку на Волжской бумажной фабрике
ANDRITZ: Inbetriebnahme der TMP-Line через удаленную поддержку на Волжской бумажной фабрике
org/BreadcrumbList»>29.05.2020 Der internationale Technologiekonzern ANDRITZ erhielt von Volga PPU в Балахне, Нижний Новгород, Россия, das vorläufige Abnahmezertifikat (Акт предварительной приемки) für den Umbau des bestehenden Holzschliff-Rejekt системы в eine TMP-Line (Thermo -механическое измельчение).
Aufgrund der Corona-Krise und um Gesundheits- und Sicherheitsrisiken zu vermeiden, wurde die komplette Inbetriebnahme über Remote-Support abgewickelt.
Сергей Пондар, генеральный директор Волжского ЦБК erklärt: «Durch die Corona-Pandemie musste das ANDRITZ-Team das Betriebsgelände während der Kommissionierung verlassen.
Wir entschieden uns gemeinsam, über Remote-Unterstützung weiterzumachen, um so erhebliche Verzögerungen bei der Inbetriebnahme der neuen TMP-Linie zu vermeiden. Diese Entscheidung война absolut richtig. Die ANDRITZ-Unterstützung aus der Ferne hat sehr gut funktioniert, und das System läuft mit ausgezeichneter Leistung. Mir der von den ANDRITZ-Experten weiterhin gebotenen Betreuung sind wir auf dem besten Weg bald volle Kapazität zu erreichen.“
Новая линия TMP-Line Hat eine Kapazität 180 Tagestonnen ofentrocken und erhöht damit die Zeitungspapierproduktion Волжской бумажной фабрики. Die Line verarbeitet Fichtenholz als Rohmaterial und beschickt die bestehenden Papiermaschinen.
ANDRITZ modernisierte die Bereich der Hoch- und Niederkonsistenz-Mahlung sowie die Sortieranlage und Liferte auch mehrere neue Komponenten, wie eine neue Hackschnitzelwäsche samt Vorbehandlung, das Zufuhrsystem zur Ho chkonsistenz-Mahlung und einen ANDRITZ-Scheibenfilter. Zusätzlich installierte ANDRITZ das komplette Automatisierungs- und Elektrifizierungsequipment samt DCS-System.